HMBS208M Microscopies et Spectroscopies pour la Biologie

Crédits 5
Responsables Andréa Parmeggiani

Christian Roumestand

Planning planning HMBS208M
Intervenants A . Parmeggiani

C. Roumestand

S. Trapani

E. Margeat

M. Nollmann

PE. Milhiet

P. Bron

F. Vandermoere

Objectifs a. Comprendre des bases physiques de ces techniques et sur quels principes elles opèrent

b. Connaitre les limites et avantages de chaque technique ainsi que ses utilisations potentielles

c. Acquérir un ensemble de connaissances de base sur des techniques usuelles permettant aux étudiants de pouvoir utiliser rapidement ces techniques

d. Identifier les grands axes d’évolution actuelle de ces techniques et leurs futurs développements techniques

Objectives
  • Understand the physical basis of experimental techniques in biophysics and the principles by which they operate;
  • Discriminate between different techniques: the limitations and advantages of each and their potential uses; 
  • Acquire a basic knowledge of common techniques that will allow you to quickly use them; 
  • Identify the main areas of current development of these techniques and future technical developments.
Description Ce cours traite des techniques de pointe et usuelles maintenant couramment utilisées par les chercheurs en biochimie et biologie cellulaire (ainsi que par les entreprises travaillant sur la préparation de nouveaux nano-biomatériaux, médicaments…).

Ces techniques sont soit des techniques de microscopie : microscopie optiques, de fluorescence et à force atomique, soit de spectroscopie : spectroscopies de fluorescence, IR et spectroscopie RMN, ainsi que la diffraction des rayons X.

Il s’appuie sur deux séances pratiques, par petit groupe, sur une des plateformes techniques des sites de recherche de Montpellier (plateforme protéomique fonctionnelle, plateforme Microscopie Rio Imaging, Plateau Microscopies électroniques, plateforme RMN et cristallographie et plateforme biophysique.

Description This course describes advanced techniques now commonly used by researchers in biochemistry, cell and developmental biology (as well as by biotechnology companies working on the preparation of new nanobiomaterials, drugs, …).

These techniques come either from microscopy: optical, fluorescence, optogenetics and atomic force microscopy, or from spectroscopy : fluorescence spectroscopy, IR and NMR spectroscopy, as well as X-ray diffraction.  Modeling is also discussed in relation to these techniques.

In addition to theoretical lectures, the course includes two practical sessions, in small groups, at  one of the Montpellier research sites (Functional Proteomics Platform, Rio Imaging Microscopy Platform, Electronic Microscopy Platform, NMR and Crystallography and Biophysics Platforms), which also include the study of numerical methods for modeling.

Observations Les compétences acquises sont :

– Notions essentielles sur les principes et le mode de fonctionnement de l’ensemble de ces techniques

– Appréhension de la réalité expérimentale par les deux séances pratiques sur des plateaux techniques

– Esprit critique vis-à-vis du choix d’utilisation d’une technique expérimentale donnée pour faire un certain type d’expérience

– Connaissance de la richesse de l’environnement technologique montpelliérain

– Apprentissage des critères de choix importants pour la mise en place d’expériences

Learning outcomes:

  • Essential concepts of the principles and modes of operation of all these techniques;
  • An understanding of experimental methods through the two practical sessions on technical platforms;
  • Critical thinking about the choice of a given experimental technique used to perform a certain type of experiment;
  • An appreciation of Montpellier’s rich technological environment ;
  • Knowledge of the important selection criteria for the implementation of experiments.
Modalités de contrôle des connaissances
1ère session Ecrit Oral TP CC
  70%   30%  

2ème session : ecrit